Percoll不连续密度梯度沉淀法分离纯化淋巴细胞和淋巴母细胞
时间:2004-02-12 00:00 来源:Medical University of South Ca 作者:Suprya Jayadev 点击:次
Percoll不连续密度梯度沉淀法分离纯化淋巴细胞和淋巴母细胞 一、原理 Percoll是一种包被乙烯吡咯烷酮的硅胶颗粒,具有低渗透压(<20 mosm/kg H₂O)和低粘度,可形成密度高达1.3 g/ml的梯度。通过预形成的密度梯度,在低离心力(200–1000 g)下,数分钟至数十分钟内即可实现高效的细胞分离。Percoll扩散常数低,梯度稳定性好,且不穿透生物膜,对细胞无毒害,因此广泛用于分离细胞、亚细胞成分、细菌及病毒,也可将受损细胞及碎片与完整活细胞分离。 二、操作方法及注意事项 1. 不同浓度(密度)Percoll溶液的制备:将9份Percoll与1份8.5% NaCl或1.5 M PBS混合,达到生理渗透压,然后用生理溶液(0.85% NaCl或0.15 M PBS)稀释至所需浓度。常用浓度与对应密度如下: Percoll浓度(%):70、60、50、40、30、20 2. 不连续密度梯度Percoll层的制备:先用牛血清湿润试管壁,去除多余血清,使后续叠加的Percoll液平稳沿管壁流下,形成清晰界面。通常用长针头注射器从高密度向低密度逐层放置;若相邻两层密度差较小,可将Percoll液放入注射器,针头斜面紧贴管壁,自然缓慢流下。 3. 装样:样品体积和细胞浓度因细胞类型而异。加样体积不宜过大,细胞浓度不宜过高,以免影响分离和回收效率。 4. 离心:通常采用400 g离心20–25分钟。由于多层Percoll间密度差较小,离心机加速和减速需缓慢平稳。 5. 取样:若目标细胞主要位于两层界面,可逐层去除Percoll液后收集界面细胞;若细胞分散于Percoll层中,则需逐层收集。收获含Percoll的细胞后,经两次洗涤即可用于培养或检测。 三、分离纯化细胞举例 1. 富含NK活性大颗粒淋巴细胞(LGL)的纯化:按顺序从下向上逐层加入50%、47.5%、45%、42.5%和40%五种不同密度的Percoll(10 ml试管,每层约1.2–1.5 ml)。从外周血分离的PBMC(1×10⁸细胞)悬于1 ml培养基中,装样、离心并取样。富含NK杀伤活性的LGL细胞通常位于42.5%与45% Percoll界面及上下两层中。 2. 纯化淋巴母细胞和去除死细胞:分别叠加50%和30% Percoll液。收取经PHA(或其他抗原、有丝分裂原)刺激的PBMC,或含较高比例异型淋巴细胞的PBMC(如肾综合征出血热患者),装样、离心并取样。管底为小淋巴细胞;两层Percoll之间为淋巴母细胞,纯度及回收率可达80%以上;30% Percoll表面为死细胞。收获的淋巴母细胞可用于表型、结构及功能研究。 四、人不同血细胞的漂浮密度 表:人不同血细胞的漂浮密度(g/ml) 红细胞:1.09–1.11 五、Percoll梯度离心补充方案(英文部分翻译) 形成梯度 分级分离 去除Percoll 试剂 |