家兔肠系膜微循环观察时，以乌拉坦或戊巴妥纳静脉注射麻醉后，背住缚于兔板上（有加温装置），剪去腹部之毛，沿腹中线作一长6～8cm的切口进入腹腔。将上腹腔脏器推向右侧，于腹腔左上方找到回盲交界处（回肠为浅红色，结肠为灰色）在该部位上的上段轻轻拉回肠袢约10cm，将该段肠管及系膜通过有机玻璃流盒的后侧壁凹槽和裤形装（见图10-12），然后浸入充满38℃灌流液的小盒中，并轻轻把肠系膜平铺在灌流盒的中央圆合上，用大头针将肠系膜固定于中央圆台内侧边的软木片上。将腹壁、浆膜层和肌层缝合，并把切口右缘皮肤缝合固定于灌流盒侧壁的锁眼处。

图10-12　检查家兔肠系膜微循环灌流盒

　　灌流盒右侧壁有一进水管与盛满任一台氏营养液的恒温压灌流瓶相连接，使营养液不断地流经小盒而自左侧壁的出水管口流出。以80W高压水银灯的光束投照平铺在中央圆台上的腹系膜上，双目显微镜放大40～80倍，可进行肠系膜血管口径、血流速度和血流状态观察。为了防止造成肠系膜的局部血流障碍和游斑性出血，要避免过分牵拉或摩擦肠系膜，要不断向肠系膜上滴加温热的生理盐水，避免干燥刺激。

　　（八）提睾丸微循环观察法

　　实验采用雄性大白鼠，体重80～110g，小于80g的大鼠提睾肌太小不利于制备，大于110g的大鼠太老，结缔组织增生，不利于观察。以25mg/kg体重剂量的戊巴比妥纳麻醉大鼠，或以130mg/100体重剂重的乌拉坦肌注（经常注入股田头肌）。将手术区域剃毛、洗净、消毒，最好进行气管切开，插管以保证呼吸顺利。进行股动脉插管测动脉压或准备静注药物。手术器械进行消毒。手术时，先用针在手术侧阴囊远端穿以缝线，将缝线固定在动物固定板的小钉上。然后在阴囊上作纵切口，切开皮肤、筋膜，轻轻剥离。将切口慢慢延长到离腹沟5～8mm处。用胶体林格氏液（pH7.35）开始轻轻灌流，于剥离的软组织上敷一层灌脱脂棉絮，棉絮浸以灌流液。将皮肤切口之每边穿两根丝线固定于动物板上。如图10-12所示，继续游离提睾肌，使之脱脑周围组织。将提睾肌轻轻作纵向切开并将其轻轻与睾丸剥离。用两个外科结扎连接睾丸和提睾肌的小血管，从两结中间剪断。如图10-13所示沿副睾纵柚将附睾系膜剪开。将睾丸和附睾经腹股沟环轻轻送入腹腔。提睾肌周围等距穿进5～6根丝线。动物仰卧，将提睾肌展铺于特制的马蹄形透明有机玻璃柱上，柱周围有等距的5～6个小钵，可将丝线结于钉上固定提睾肌。透明柱可调高低，其周围为恒温灌流盒（与金黄地鼠颊囊灌流装置相似）。

图10-13　分离提睾肌方法

　　提睾肌极薄，其上有各种口径的微血管，成像清晰，适于进行各种微循环参数测定，尤其独特的是提睾肌上最微细的毛细血管网也特别清楚，适于进行管腔、管壁动态变化和微血管与组织间物质交换的研究。也可用染料或荧光示踪剂进行淋巴微循环的研究。