日前，中国科学院生态环境研究中心环境化学与生态毒理学国家重点实验室汪海林研究组在DNA损伤修复方面取得重要进展，相关研究成果近日在线发表于《细胞发现》杂志。

具有活性的RecA/Rad51核蛋白丝的结构及其介导的链交换过程，一直以来是DNA修复研究的热点和难点。 汪海林研究组设想，在生理条件下，由于ATP的不断水解，相应地，RecA可解离，离去的RecA留下空位，引起新的RecA结合和组装，因此，将形成一种动态的RecA核蛋白丝。但是，当前的单分子分析等先进技术也难以测量RecA核蛋白丝的结合计量学，因此难以分析这种动态结构。

该研究组在前期研究工作的基础上，利用研制的毛细管电泳—激光诱导荧光偏振装置，并进一步发展了研究RecA在单链DNA（ssDNA）上动态组装的分析新方法。利用这种新分析方法，他们发现，在生理条件下（即存在有效的ATP水解），RecA在ssDNA上组装可形成三种类型的核蛋白丝，包括高、中、低密度的核蛋白丝，但主要形成低密度、不饱和的核蛋白丝组装体，其中超过一半的DNA并未结合RecA蛋白，即裸露的。在线荧光偏振分析、电镜成像分析、酶切保护性分析等一致证明了这一结果。

该研究组通过一系列体外和活体实验，证明了介导同源重组修复的核蛋白丝的基本结构是由RecA蛋白通过ATP水解有限组装到单链DNA上形成的不饱和核蛋白丝组装体。这一发现是对传统同源重组修复的关键核蛋白丝组装体基础结构认识的一个重要改变，为深入理解同源重组修复机制提供理论依据。