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1. 玻璃仪器的清洗

实验中所用的玻璃仪器清洁程度直接影响实验结果，尤其在生物化学实验中，玻璃仪器的清洁要求更高。这是因为生物化学实验中涉及的蛋白质、酶、核酸等物质通常以“毫克”或“微克”计量，稍有杂质便可能导致实验误差甚至失败。此外，生物化学实验对金属离子（如钙、镁离子）、去污剂和有机物残留等污染物极为敏感。因此，玻璃仪器（包括离心管等塑料器皿）的彻底清洗至关重要。

1.1 初用玻璃仪器的清洗

新购买的玻璃仪器可能附着游离的碱性物质，需按照以下步骤清洗：

• 用0.5%的去污剂清洗表面。
• 用自来水冲洗干净。
• 将仪器浸泡在1%～2%的盐酸溶液中过夜（至少4小时）。
• 再次用自来水冲洗，最后用无离子水冲洗两次。
• 在100℃～120℃的烘箱内烘干备用。

1.2 使用过的玻璃仪器的清洗

使用过的玻璃仪器清洗步骤如下：

• 用自来水洗刷至无明显污物。
• 使用毛刷沾取去污剂（粉）清洗，或将仪器浸泡在0.5%的清洗剂中进行超声清洗（注意：比色皿不可超声清洗）。
• 用自来水彻底冲洗去污剂残留，再用无离子水冲洗两次。
• 烘干备用（计量仪器不可烘干）。
• 清洗后，器皿内外不应挂有水珠；如有水珠残留，需重新清洗。

1.3 比色皿的清洗

比色皿（石英或玻璃材质）清洗时需特别注意：

• 避免使用强碱清洗，以免损坏抛光表面。
• 可使用洗液或1%～2%的去污剂浸泡，再用自来水冲洗。
• 使用绸布包裹的小棒或棉花球棒刷洗，确保内外壁无水珠。

2. 塑料器皿的清洗

聚乙烯、聚丙烯等塑料器皿在生物化学实验中应用广泛。清洗步骤如下：

• 首次使用时，用8mol/L尿素（用浓盐酸调至pH=1）清洗。
• 依次用无离子水、1mol/L KOH、无离子水清洗。
• 用10^-3 mol/L EDTA溶液清除金属离子污染。
• 最后用无离子水彻底清洗。

后续使用时，可用0.5%的去污剂清洗，再用自来水和无离子水冲洗。

3. 洗液的配制

洗液在清洗过程中至关重要，但需注意安全操作，尤其是涉及重铬酸钾的配制。以下是常用洗液的配制方法：

• 重铬酸钾洗液：取100mL工业浓硫酸置于烧杯中，小心加热，缓慢加入5g重铬酸钾粉末，搅拌至溶解，冷却后储存于磨口玻璃瓶中。
• 工业浓盐酸：用于清洗水垢或无机盐沉淀。
• 5%草酸溶液：加入数滴硫酸酸化，可清除高锰酸钾痕迹。
• 30%硝酸溶液：适用于清洗二氧化碳测定仪及微量滴管。

4. 玻璃和塑料器皿的干燥

生化实验中，玻璃和塑料器皿的干燥通常在110℃～120℃的烘箱或烘干机中进行。避免使用丙酮荡洗后吹干的方法，以防有机物残留干扰实验。需要注意的是，硝酸纤维素制成的塑料离心管不可加热，否则可能发生爆炸。

5. 移液技术

移液技术是生物化学实验中重要的基本操作。常用的移液工具包括滴管、移液管、微量进样器和自动取液器。以下是常见移液工具及其使用注意事项：

• 滴管：适用于半定量移液，常见容量为1mL～5mL。
• 移液管：分为无分度和分度两种，使用前需清洗至内壁不挂水珠。
• 自动取液器：适用于多次重复的快速定量移液，精密度高，操作便捷。

6. 缓冲溶液的配制与使用

缓冲溶液在生物化学实验中用于维持pH稳定。常见缓冲液包括磷酸盐缓冲液、Tris缓冲液、有机酸缓冲液等。配制时需根据实验要求选择合适的缓冲体系，并注意温度、浓度等因素对pH的影响。

7. pH值的测定

pH值测定是实验室常见操作，可通过pH试纸或pH计进行。使用pH计时需注意电极的校正和维护，以确保测量精度。