番茄遗传转化实验方案
时间:2005-07-18 00:00 来源:未知 作者:未知 点击:次
描述 本文详细描述了番茄(Solanum lycopersicum)的遗传转化实验方案,包括种子灭菌、萌发、农杆菌介导的转化、共培养、愈伤组织诱导、芽再生、生根及转基因植株的驯化与筛选。该方案适用于多种番茄品种,如VF36、Mottle和Money-Maker,是植物基因工程研究中的经典方法。 实验步骤 1. 种子灭菌与萌发 将干燥的番茄种子在70%乙醇中灭菌2分钟,随后在3.3%次氯酸钠(10%次氯酸钠的1:3稀释液)中加入0.1% Tween 20,于250 ml锥形瓶中用磁力搅拌器快速搅拌20分钟。之后用无菌双蒸水冲洗3次。将灭菌后的种子播种于Nitsch培养基(含0.8%琼脂)的Magenta盒中,密度因品种而异(VF36和Mottle每盒100粒,Money-Maker每盒25粒)。在25°C、光照条件下萌发。 2. 外植体制备 当子叶展开且真叶尚未出现或极小时,取幼苗。将幼苗顶部成批剪下,立即浸入Jones液体培养基中。在培养皿(100×15 mm)中切割子叶外植体:握住幼苗茎部使其倒置,将子叶在近轴端(宽端)和远轴端(保留约2/3子叶)切割,切割时子叶浸没于培养基中。将切好的子叶倒置(近轴端朝下)置于饲养层平板上(100×15 mm),饲养层平板含有MS培养基(含1 mg/L 2,4-D和100 μM乙酰丁香酮),其上铺有一层悬浮细胞(胡萝卜或烟草细胞,对数生长期)和无菌滤纸。子叶密集放置(每张直径7 cm的Whatman #1滤纸上放置60-100片子叶)。 3. 农杆菌培养与侵染 将子叶在生长室(25°C,黑暗)中预培养24小时,同时培养农杆菌:在50 ml试管中加入10 ml 2YT培养基(含适当抗生素),于28°C、230 rpm、黑暗条件下振荡培养过夜。将农杆菌菌液用Jones培养基(含100-200 μM乙酰丁香酮,pH 5.2)稀释至OD600=0.25-0.35。取7-10 ml稀释菌液分装至50×15 mm培养皿中。将一平板上的子叶浸入含10 ml农杆菌悬液的培养皿中,室温孵育15-30分钟。取出子叶,用无菌Whatman #1滤纸吸去多余菌液,然后放回饲养层平板(密度降低至每板30-50片子叶)。 4. 共培养与筛选 共培养40-48小时后,将子叶转移至含SL.1培养基(0.8%琼脂)的100×15 mm培养皿中,子叶倒置放置。用保鲜膜封口,放回生长室培养。通常在10-15天内,子叶近轴端会出现愈伤组织、绿色突起或芽。14天后,将子叶转移至含SL.2培养基(0.8%琼脂)的100×20 mm培养皿中,促进芽器官发生。2周后,将芽或愈伤组织从衰老的子叶上切下,再次转移至SL.2培养基平板,继续培养2周。随后将芽转移至SL.3培养基平板(3-4周)。 5. 生根与移栽 将正常生长的芽转移至生根培养基(Nitsch培养基含150 mg/L羧苄青霉素、50 mg/L卡那霉素和1-2 mg/L IBA)。芽在7-15天内生根。将生根的植株移栽至湿润土壤中,置于弱光条件下,使用小盆并覆盖透明容器以保持湿度。移栽前应冲洗掉根部残留的琼脂。在5天内逐渐打开容器盖。植株驯化后,可移栽至大盆并置于温室中。 6. 转基因种子筛选 收获R1代种子,在含50 mg/L卡那霉素的Nitsch培养基上萌发,筛选卡那霉素抗性植株。抗性植株表现为:植株较高、根系分支、下胚轴花青素色素减少或无。敏感植株虽能萌发但矮小、根系短且无分支、下胚轴花青素色素增强。筛选在播种后2-4周进行最为可靠。 培养基配方 Jones培养基:MS无机盐 + Nitsch维生素。 注意事项 1. 所有操作需在无菌条件下进行。 |
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