RNA提取是分子生物学研究中的基础技术，确保RNA的纯度和完整性对后续实验至关重要。

首先，将所有实验器皿浸泡于0.1% DEPC（乙酸二乙酯）溶液中12小时，以灭活RNase酶，随后在70-80℃下烘烤干燥，接着在103.4kPa、121℃高压灭菌15分钟，最后再次70-80℃烘烤干燥，确保无RNA酶污染。

取出超低温保存的组织样品，去除包装袋后，戴双层乳胶手套，迅速用锤子将组织敲碎称重。称取适量组织置于干烤过的陶瓷研钵中，用杵子研磨，同时用液氮冷冻组织，保持其低温状态，防止RNA降解。研磨至组织完全粉碎成细粉末。

将粉末转移至冰冷的匀浆器中，加入溶液D（每克组织加入10ml），充分匀浆至透明均匀的匀浆液。

将匀浆液分装入冰冷的50ml离心管中，依次加入：1ml 2 mol/L乙酸钠（pH 4.0）、10ml水饱和酚、2ml氯仿-异戊醇（49:1），充分混匀后用力震荡10秒，使溶液乳化呈乳白色，无明显分层。随后冰浴15分钟以促进相分离。

在4℃条件下，以10,000×g离心20分钟，小心吸取上清液，避免吸取界面层的DNA和蛋白质。向上清液中加入等体积预冷至-20℃的异丙醇，混匀后置于-20℃保存1小时以沉淀RNA。

再次在4℃、14,000×g离心20分钟，弃去上清液，短暂离心后吸干残留液体。将沉淀溶解于2ml溶液D中，分别用等体积的酚-氯仿和氯仿-异戊醇（49:1）各抽提一次，以进一步纯化RNA。

加入等体积预冷至-20℃的异丙醇，混匀后置于-20℃沉淀2小时。

最后，在4℃、13,600×g离心20分钟，弃去上清液，用预冷至-20℃的75%乙醇洗涤沉淀三次，去除杂质。将沉淀在室温下晾干，溶解于400μl DEPC处理过的无RNA酶水中。

取1μl溶液进行1.2%琼脂糖凝胶电泳检测RNA的完整性，并用分光光度计测定OD260、OD280和OD230值，评估RNA的纯度和浓度。

该方法严格控制了RNA酶污染和RNA降解，确保提取的RNA适用于后续的分子生物学实验，如RT-PCR、Northern blot等。