2025年12月15日,《自然-神经科学》发表的一项技术报告,介绍了首个完全由人诱导多能干细胞(iPS细胞)分化构建的微流控三维血脑屏障(BBB)模型。该模型整合了内皮细胞、壁细胞和星形胶质细胞,成功模拟了人脑BBB的关键结构与功能特征。更重要的是,研究者在模型中敲除了中风与小血管病风险基因FOXF2,不仅成功复现了与体内一致的病理表型,还利用脂质纳米颗粒递送Foxf2 mRNA实现了功能挽救,为研究神经血管疾病机制和开发靶向药物提供了强大的人源化平台。
血脑屏障(BBB)是大脑的“守门人”,精确调控血液与脑组织间的物质交换,其功能障碍是脑小血管病、中风乃至阿尔茨海默病等多种神经系统疾病的核心病理环节。然而,由于物种差异,基于啮齿类动物的研究结论常难以直接转化至人类。构建一个能真实反映人脑BBB生理与病理特征的体外模型,是领域内长期追求的目标。
来自德国神经退行性疾病研究中心(DZNE)和ISAR生物科学研究所的团队,利用前沿的干细胞与微流控技术,攻克了这一难题。他们首先建立了高效、标准化的分化方案,从同一株iPS细胞出发,分别获得了构成BBB的三种核心细胞:脑内皮细胞(iECs)、壁细胞(iPCs/iSMCs)和星形胶质细胞(iASs),并通过多组学分析(特别是蛋白质组学)全面验证了这些细胞的身份与纯度。
从2D到3D:构建可灌注的“芯片大脑微血管”
研究的关键创新在于,将这些同源iPS细胞来源的细胞按特定比例混合,注入微流控芯片的中央通道中,使其在三维水凝胶环境中自组织。经过约一周的培养,iECs奇迹般地自我组装成具有连续管腔的血管样网络,并表现出真实BBB的核心特征:
- 屏障结构:内皮细胞间形成了由CLDN5、TJP1等蛋白组成的致密连接,电镜可观察到典型的连接结构。
- 正确极性:细胞表现出明确的顶-底极性,顶端分泌Podocalyxin,基底侧则沉积胶原蛋白。
- 细胞互作:星形胶质细胞伸出突起包裹血管,壁细胞则贴附于内皮管道的基底侧,模拟了体内的神经血管单元结构。
- 功能完备:这些血管样管道可被10kDa/40kDa的葡聚糖乃至人全血灌注而不渗漏,证明了其功能屏障的完整性。同时,内皮细胞间能传递钙波,显示出功能性的细胞通讯。
与传统的2D Transwell模型相比,该3D模型更真实地反映了体内BBB的复杂结构和细胞间相互作用。
精准模拟疾病:FOXF2敲除重现BBB功能障碍
为验证模型的疾病研究价值,研究者利用CRISPR技术,在iPS细胞中敲除了脑小血管病和中风的风险基因FOXF2,并将其分化为iECs,再与正常的壁细胞和星形胶质细胞组装成3D BBB模型。
在3D模型中,FOXF2敲除的iECs表现出显著的BBB功能障碍:
- 囊泡运输异常:与对照组相比,敲除组内皮细胞中CAV1阳性的小窝(caveolae)密度显著增高,电镜下可见大量囊泡结构,指示转胞吞作用增强。
- 细胞连接受损:紧密连接蛋白TJP1的表达显著下调,电镜观察到内皮连接处出现拉长的突起和局灶性开口,屏障完整性遭到破坏。
- 通透性增加:功能上,敲除组iECs的跨内皮电阻(TEER)降低,且对葡聚糖的渗漏性增加。
至关重要的是,研究者在平行的内皮细胞特异性Foxf2敲除小鼠(Foxf2iECKO)体内模型中,观察到完全一致的CAV1上调和TJP1下调表型,强有力地证明了该人源化3D模型能够精准复现体内的疾病关键特征。
机制探索与治疗概念验证
利用这一模型,研究者对FOXF2敲除的iECs进行了定量蛋白质组学分析,发现差异蛋白显著富集于“囊泡介导的转运”和“细胞连接组装”等通路,从分子层面印证了观察到的细胞表型。进一步的ChIP-seq分析提示,FOXF2可能直接结合在TJP1和CAV1基因位点附近进行调控,为理解其分子机制提供了线索。
更具转化意义的是,研究者在该模型中测试了脂质纳米颗粒(LNP)递送Foxf2 mRNA的治疗策略。结果显示,将载有Foxf2 mRNA的LNP灌注到FOXF2敲除的3D血管中后,可成功将mRNA递送入iECs,使其FOXF2蛋白水平恢复,进而显著逆转了CAV1上调和TJP1下调的病理表型,并减少了内吞摄取。这一概念验证实验,充分展示了该模型在筛选和评估靶向BBB的基因治疗或药物递送策略方面的巨大潜力。
总结与展望
这项研究提供了一个高度生理相关性、可精准基因操控、且完全来源于人源细胞的3D BBB平台。它不仅在基础研究层面为解析人类BBB的发育、稳态维持及疾病机制提供了前所未有的工具,更在转化医学层面为高通量药物筛选、基因治疗载体(如AAV、LNP)的BBB穿透效率评估,以及个体化精准医疗策略的开发铺平了道路。
该模型的建立是神经血管生物学领域的一项重要里程碑。未来,通过进一步整合微流控芯片的灌流系统以模拟生理剪切力,并引入更多细胞类型(如小胶质细胞、神经元),该平台将能够更完整地模拟“神经血管单元”的复杂互作,从而推动我们对脑健康与脑疾病的理解迈向新高度。
参考文献:
A fully iPS-cell-derived 3D model of the human blood–brain barrier for exploring neurovascular disease mechanisms and therapeutic interventions. Nat Neurosci 29, 479–492 (2026).
相关阅读:
- Campisi, M. et al. 3D self-organized microvascular model of the human blood-brain barrier. Biomaterials 180, 117-129 (2018).
- Rezai, A. R. et al. Focused ultrasound-mediated liquid biopsy in a human blood-brain barrier model. Nat. Biomed. Eng. 7, 110-123 (2023).