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高效感受态细胞制备方法详解

2005-06-22 10:17 未知 未知 阅读 0
核心摘要: 本文系统总结了高效感受态细胞的多种制备方法,包括Inoue法、TSS法及氯化钙法等,详细阐述了试剂配制、操作步骤及关键要点,并深入分析了影响转化效率的核心因素如培养基装量、pH值、培养温度、离子浓度及速冻保存等,为分子生物学实验者提供实用指南。

高效感受态细胞是分子生物学实验中实现高效转化、克隆和文库构建的关键。本文系统总结了多种经典与改良的高效感受态制备方法,涵盖Inoue法、TSS法及氯化钙法等,并深入解析影响转化效率的核心因素,如培养基装量、pH值、培养温度、离子浓度及速冻保存等,为实验者提供实用指南。

方法一:Inoue法(改良版)

该方法基于1990年《Gene》期刊上Inoue H.等提出的高效感受态制备方案,经实验室优化后转化效率可达10^8–10^9 CFU/μg,特别适用于大片段克隆和文库构建。

试剂配制:

A液:1 M MnCl₂;B液:1 M HEPES,pH 6.2–6.8,无菌水配制,无需灭菌;C液:称取CaCl₂ 0.10 g、KCl 1.18 g,溶于46 ml三蒸水,121℃高压灭菌后,加入0.6 ml B液和3.3 ml A液,混匀冰浴备用。

操作步骤:

1. 将大肠杆菌在LB平板上划线,37℃培养约17小时至单菌落出现。

2. 挑取2–4个饱满单菌落,接种于100 ml SOB培养基(500 ml三角瓶),37℃、300 rpm剧烈振荡培养3–4小时。

3. 将培养温度调至18℃,继续以280 rpm振荡培养至OD600约0.4–0.6。

4. 冰浴冷却10分钟,4℃、2000 g离心5分钟收集菌体。

5. 弃上清,用4 ml预冷TB缓冲液轻轻重悬菌体,加入280 μl DMSO(国产分析纯),混匀后冰浴15分钟。

6. 分装至1.5 ml EP管,用纱布包裹后浸入液氮速冻,至少12小时后转移至-70℃冰箱保存。

关键要点:

• 洁净是首要条件,所有器具需彻底清洗,避免去污剂残留。

• 离心力不超过2500 g,建议1500–2000 g离心5分钟。

• 涂板时避免反复涂抹,轻轻在平板上带过即可;涂板后空气晾干20–30分钟可减少卫星菌落。

• 预冷操作有助于提高效率,但全程低温并非绝对必要。

方法二:Inoue法(标准版)

1. 从液氮或-80℃取出大肠杆菌(如DH5α、JM109、HB101),在LB平板上划线,37℃过夜培养。

2. 挑取直径1–3 mm单菌落,接种至250 ml SOB培养基(3 L锥形瓶),18℃、150–250 rpm培养19–50小时(无冷却摇床可在室温培养,但不可高于37℃)。

3. OD600达0.4–0.8时停止培养,冰水浴冷却10分钟。

4. 4℃、3000 g离心15分钟,弃上清,用1/3体积冰冷TB溶液重悬,冰浴10分钟。

5. 再次离心,用1/12.5体积TB重悬,加入DMSO至终浓度7%,冰浴10分钟。

6. 分装0.1–1 ml,液氮速冻后保存于-80℃。

方法三:zihudie改良法

1. 活化菌种:液氮保存的大肠杆菌划线于LB平板,37℃培养。

2. 挑取单菌落接种于SOC液体培养基,18℃、200–250 rpm培养至OD600=0.5–0.8。

3. 4℃、8000 rpm离心10分钟收集菌体,用预冷TB Buffer重悬,重复洗涤一次。

4. 用8 ml预冷TB Buffer重悬,缓慢加入DMSO至7%,冰浴10分钟后分装,液氮保存。

方法四:氯化钙法(经典)

1. 单菌落接种2 ml LB,37℃、120 rpm过夜,1%转接至新鲜LB,37℃、200 rpm培养2小时至OD600=0.4–0.5。

2. 取2 ml菌液,冰浴15分钟,4℃、6000 rpm离心5分钟,弃上清,重悬于1 ml 0.1 M CaCl₂,冰浴20分钟。

3. 4℃、6000 rpm离心10分钟,重悬于200 μl 0.1 M CaCl₂,冰浴30分钟后直接用于转化或短期保存。

方法五:TSS法(高效简便)

TSS法转化效率高于氯化钙法,适用于多数大肠杆菌菌株。

TSS缓冲液配制(pH 6.1): 7.0 ml LB、2.0 ml 50% PEG6000、0.5 ml DMSO、0.2 ml Mg²⁺(0.1 ml 1 M MgCl₂ + 0.1 ml 1 M MgSO₄)、0.3 ml ddH₂O。

操作步骤:

1. 单菌落接种2 ml LB,37℃、250 rpm培养至OD600=0.2–0.4。

2. 离心收集菌体,用10 ml TSS重悬,分装后-70℃保存。

3. 转化:取100 μl感受态细胞,加入<5 μl质粒,冰浴30分钟,42℃热激90秒,冰浴2分钟,加1 ml LB,37℃振荡1小时后涂板。

影响转化效率的关键因素:

洁净度:所有器具必须彻底清洁,避免离子或去污剂污染。

培养基装量:培养基体积/三角瓶容量≤100 ml/500 ml或50 ml/250 ml,以保证有氧生长。

pH值:培养前后pH维持在6.5以上,避免低于6.0。

OD值:收获时OD600控制在0.4–0.8,兼顾菌体总量与对数生长状态。

Mg²⁺离子:在收获前20–30分钟加入20 mM MgCl₂可提高效率。

培养温度:较低温度(18–22℃)有利于感受态形成。

保存剂:DMSO优于甘油,可提升效率。

速冻:液氮速冻后保存于-80℃,可维持高效转化能力。

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