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CRISPR揭示癌症药物遭遇的抵抗机制

2016-04-14 18:08 西班牙国家癌症研究中心 Molecular Cell 阅读 0
核心摘要: 西班牙国家癌症研究中心通过全基因组CRISPR-Cas9筛选发现,CDC25A决定癌细胞对ATR抑制剂的敏感性。CDC25A缺陷细胞能抵抗高剂量ATR抑制剂,而WEE1抑制剂可恢复其毒性。此外,CRISPR技术还被用于构建结直肠癌和胰腺癌模型,揭示癌症发展机制。

合成致死(synthetic lethality)是指两个非致死基因同时失活导致细胞死亡的现象。利用这种效应开发的抗癌药物,可以特异性杀死癌细胞,而不危害健康细胞。ATR激酶的抑制剂就是这样一种药物,对表达特定癌基因的细胞特别有毒性。目前,ATR抑制剂正逐步走向临床,但癌细胞对ATR抑制剂的抵抗机制尚未被充分研究。

西班牙国家癌症研究中心的研究人员对此进行了深入研究。他们通过全基因组CRISPR-Cas9筛选发现,CDC25A决定着癌细胞对ATR抑制剂的敏感性。这项研究发表在四月七日的《Molecular Cell》杂志上。

研究显示,CDC25A缺陷细胞能够抵抗高剂量的ATR抑制剂,因为它们不能在药物作用下过早进入有丝分裂。用WEE1抑制剂强制细胞进入有丝分裂,可以恢复ATR抑制剂对CDC25A缺陷细胞的毒性。这项研究有助于更好地理解ATR抑制剂的杀伤作用,从而更有效地使用这种抗癌药物。

CRISPR–Cas9系统可以很容易地改写多种生物的基因组,这种技术为癌症遗传学领域带来了一场变革。结直肠癌的发展始于良性肿瘤(腺瘤)的形成,属于癌症前期病变,一旦累积更多遗传突变就会发展成为结直肠癌。Keio大学的研究团队建立了源自正常肠道上皮的类器官,并用CRISPR系统向其中引入了多个突变。这项发表在《Nature Medicine》上的研究,展示了驱动通路突变对结直肠癌侵袭性的影响。

含有干细胞巢蛋白的培养基可以长期培养小鼠和人类的肠道干细胞,生成遗传学和表型稳定的上皮类器官。荷兰艺术与皇家科学院主席、美国国家科学院院士Hans Clevers教授领导的研究团队,将CRISPR/Cas9技术用于体外培养的人类肠道干细胞,陆续引入了四个最常见的结直肠癌基因突变(APC、P53、KRAS和SMAD4)。研究显示,拥有四重突变的细胞不需要任何干细胞巢蛋白就能够生长,而且还能耐受抑癌药物Nutlin-3。这些细胞移植到小鼠体内后,长成了浸润性肿瘤。

胰腺癌生长快速且转移率高,被称为“癌中之王”。转基因小鼠模型是分析基因功能的理想途径,为人们揭示了许多胰腺癌发展的基础信息,但建立转基因小鼠模型需要较长时间。慕尼黑工业大学的研究团队建立了基于转染的CRISPR/Cas9递送体系,可对胰腺基因组进行快速有效的多重编辑,以便全面理解胰腺癌的发展机制。这项研究发表在《Nature Communications》上。

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