检查方法：可将各部分十二指肠引流液滴于载玻片上，加盖片后直接镜检。为提高寄生虫检出率，常将各部分引流加生理盐水稀释搅抖后，分装离心管，以2000rpm/min，离心5～10分钟，吸取沉渣涂片镜检。如引流液过于粘稠，应先加10％NaOH消化后再离心。引流中的贾第虫滋养体常附着在粘液小块上，或虫体聚集成絮片状物。肝片形吸虫卵与姜片虫卵不易鉴别，但前者可出现于胆汁；而后者只见于十二指肠液中。

　　3．尿　一般先离心，后取沉渣镜检。但乳糜尿需加等量乙醚，用力振荡，使脂肪溶于乙醚。然后吸去脂肪层，离心，取沉渣镜检。

　　4．鞘膜积液　主要检查班氏微丝蚴。阴囊皮肤经碘酒精消毒后，用注射器抽取鞘膜积液作直接涂片检查，也可加适量生理盐水稀释离心，取沉渣镜检。

　　5．阴道分泌物　检查阴道毛滴虫。

　　直接涂片法：用消毒棉签在受检查者阴道后穹窿、子宫颈及阴道壁上取分泌物，然后在有1～2滴生理盐水的载玻片上作涂片镜检，可发现活动的虫体。天气寒冷时，应注意保温。

　　悬滴法：取阴道分泌物置于周缘涂抹一薄层凡士林盖片上的生理盐水中，翻转盖片小心覆盖在具凹孔的载玻片上，稍加压使两片粘合，液滴悬于盖片下面，镜检。

　　（四）其它器官组织检查

　　1．骨髓穿刺　主要检查杜氏利什曼原虫无鞭毛体。一般常作髂骨穿刺，患者侧卧，露出髂骨部位。视年龄大小，选用17～20号带有针芯的干燥无菌穿刺针，从髂骨前上刺后约1cm处刺入皮下，当针尖触及骨面时，再慢慢地钻入骨内约0.5～1.0cm，即可拔出针芯，接上2ml的干燥注射器，抽取骨髓液。取少许骨髓液作涂片；甲醇固定，同薄血膜染色法染色，油镜检。

　　2．淋巴结穿刺

　　⑴利什曼原虫：检出率低于骨髓穿刺，但方法简便、安全，且患者经治疗后，淋巴结内原虫消失较慢，故仍有一定价值。一般选腹股沟部，先将局部皮肤消毒，用左手拇指和食指捏住一个较大的淋结，右手取干燥无菌的6号针头刺入淋巴结，此时淋巴结组织液自能进入针内。稍待片刻，拔出针头，将针头内少量的淋巴结组织液注于载玻片上，作涂片染色检查。也可用摘除的淋巴结的切面做涂片，染色后镜检。

　　⑵丝虫成虫：可用注射器从可疑的淋巴结节中抽取成虫，或剖检摘除的结节寻找成虫，也可作病理组织切片检查。

　　3．肌肉活检

　　⑴旋毛虫幼虫：用外科手术从患者的腓肠肌或肱或股二头肌取米粒大小的肌肉一块，置于载玻片上，加50％甘油滴，盖上另一载玻片，均匀用力压紧，低倍镜下观察。取下肌肉须立即检查，否则幼虫变得模糊，不易检查。

　　⑵猪囊尾蚴：摘取肌肉内的结节，剥除外层纤维被膜，在2张载玻片间压平、镜检。也可经组织固定后作切片染色检查。

　　4．皮肤　检查疥螨，蠕形螨，利什曼原虫等。

　　⑴疥螨：参看“疥螨和疥疮”！一节。
　⑵蠕形螨：参看“蠕形螨和蠕形螨病”一节。
　⑶利什曼原虫：在皮肤上出现丘疹和结节等疑似皮肤型黑热病患者，可选择皮损较明显之处，作局部消毒，用干燥灭菌的注射器，刺破皮损处，抽取组织液作涂片；或用消毒的锋利小剪，从皮损表面剪取一小片皮肤组织，以切面作涂片；也可用无菌解剖刀切一小口，刮取皮肤组织作涂片。以上涂片均用瑞氏或姬氏染液染色。如涂片未见原虫，可割取小丘疹或结节，固定后，作组织切片染色检查。

　　5．直肠粘膜　用直肠镜从直肠粘膜病变组织内可查见日本血吸虫卵及溶组织阿米巴滋养体。

　　日本血吸虫卵：用直肠镜自直肠取米粒大小的粘膜一块，经水洗后，放在2载玻片间，轻轻压平，镜检。虫卵鉴别见表21。－3。

表21－3　粘膜内血吸虫卵未染色之鉴别

　　溶组织阿米巴：用乙状结肠镜观察溃疡形状，自溃疡边缘或深层刮取溃疡组织，置于载玻片上，加少量生理盐水，盖上盖片，轻轻压平，立即镜检。也可取出一小块病变的粘膜组织，固定切片，染色检查。

　　6．肺组织　检查卡氏肺孢子虫包囊。取一小块肺组织作涂片，自然干燥后甲醇固定，用改良银染色法进行染色。

　　改良银染色法染色步骤：

　　1．将肺涂片置于5％铬酸，氧化15分钟，温度为20℃。氧化后的标本均从流水冲洗数秒。
2．1％亚硫酸氢钠经1分钟，自来水冲洗后，蒸馏水洗涤3～4次。
3．放入四胺银工作液内，并在60℃孵育约90分钟，至标本转至黄褐色为止。流水、蒸馏水各洗5分钟。
4．0.1％氯化金2～5分钟，蒸馏水洗4～5次。
5．2％硫代硫酸钠5分钟，流水至少洗10分钟。
6．亮缘复染45秒。
7．95％，99％，100％乙醇逐级脱水。
8．二甲苯透明3次，树胶封片。

　　染色结果显示，卡氏肺孢子虫包囊呈圆形、卵圆形或不规则的多角形，囊壁为淡褐色或深褐色。红细胞为淡黄色，其余背景呈淡绿色。

（陈佩惠 姜洪杰）

　　二、免疫论断及新技术应用

　　（一）皮内试验

　　利用宿主的速发型变态反应，将特异抗原液注入皮内，观测皮丘及红晕反应以判断有无特异抗体（IgE）的存在称皮内试验（intradermal 　test，IDT）。

　　皮内试验用于多种寄生虫病的检测，如血吸虫病、肺吸虫病等。最常用于血吸虫病的调查，操作简单，并且可即时观察结果，适宜现场应用。大多用粗制可溶性血吸虫虫卵抗原（稀释度为1：4000）或成虫冷浸抗原（稀释度为1：8000）敏感性高，其阳性率在93％～97％，但有部分假阳性反应（2.1％～3.5％），并且对其他寄生虫病交叉反应较高。皮内试验可用作①过筛方法，先作皮试，阳性者再作进一步追查；②临床辅助诊断；③考核预防效果，用作检查新感染的方法，特别对儿童。

　　（二）染色试验

　　染色试验（dye　test，DT）是比较独特的免疫反应，是目前诊断弓形虫病较好的方法，已广泛用于该病的临床诊断和流行病学调查。

　　新鲜弓形虫滋养体和正常血清混合，在37℃作用1小时或室温数小时后，大部分弓形虫失去原来的新月形，而变为圆形或椭圆形，用碱性美蓝染色时着色很深。但新鲜弓形虫和免疫血清混合时，虫体仍保持原有形态，用碱性美蓝染色时，着色很浅或不着色。其原因可能是由于弓形虫受到特异体抗体和辅助因子协同作用后，虫体细胞变性，结果虫体对碱性美蓝不易着色。

　　材料和试剂以弓形虫速殖子为抗原；采用正常人血清为致活因子。碱性美蓝溶液，取美蓝10g加入95％酒精100ml，制成饱和酒精溶液，过滤后取3ml加pH11，要求临用时新鲜配制。待检血清经56℃30分钟灭活，冰箱保存备用。

　　方法将待检血清用生理盐水倍比稀释，每孔0.1ml，加上述稀释的弓形虫速殖子0.1ml，置37℃水浴1小时，加碱性美蓝溶液0.02ml／孔，37℃水浴15分钟，以每孔聚悬液1滴于载玻片上，加盖玻片，高倍显微镜检查，计数100个弓形虫速殖子，统计着色和不着色速殖子比例数。

　　结果判定以能使50％弓形虫不着色的血清最高稀释度为该血清染色试验阳性效价。阳性血清稀释度1：8为隐性感染；1：256为活动性感染；1：1024为急性感染。

　　（三）环卵沉淀试验

　　环卵沉淀试验（circumoval　precipitin　test，COPT）是以血吸虫整卵为抗原的特异免疫血清学试验，卵内毛蚴或胚胎分泌排泄的抗原物质经卵壳微孔渗出与检测血清内的特异抗体结合，可在虫卵周围形成特殊的复合物沉淀，在光镜下判读反应强度并计数反应卵的百分率称环沉率。

　　1．常规法用载玻片或凹玻片进行，加样本血清后，挑取适量鲜卵或干卵（约100～150个，从感染动物肝分离），覆盖24×24mm盖片，四周用石蜡密封，37℃保温48小时后，低倍镜观察结果，必要时需观察72小时的反应结果。典型的阳性反应为泡状、指状、片状或细长卷曲状的折光性沉淀物，边缘整齐，与卵壳牢固粘连。阴性反应必须观察全片；阳性者观察100个成熟卵，计环沉率及反应强度比例。环沉率是指100个成熟虫卵中出现沉淀物的虫卵数。凡环沉率≥5％者可报告为阳性，（在基本消灭和消灭血吸虫病地区环沉率≥3％者可判为阳性），1％～4％者为弱阳性。环沉率在治疗上具有参考意义。

　　2．分级强度判定

　　“－”折光淡，与虫卵似连非连；“影状”物（外形不甚规则，低倍镜下有折光，高倍镜下为颗粒状）及出现直径小于10μm的泡状沉淀物者，皆为阴性。

　　“＋”虫卵外周出现泡状沉淀物（＞10μm），累计面积小于虫卵面积的1／2；或呈指状的细长卷曲样沉淀物，不超过虫卵的长径。

　　“＋＋”虫卵外周出现泡状沉淀物的面积大于虫卵面积的1／2；或细长卷曲样沉淀相当或超过虫卵的长径。

　　“＋＋＋”虫卵外周出现泡状沉淀物的面积大于虫卵本身面积；或细长卷曲样沉淀物相当或超过虫卵长径的2倍。

　　3．近年来对COPT的方法作了一些改进如①双面胶纸条法：将双面胶纸条制特定的式样作COPT，可省略蜡封片法的繁琐步骤，具有操作简易，方法规范，提高工效和避免空气污染的优点。双面胶纸条法COPT（DGS－COPT）已在现场扩大应用，今后若能将该法配套干卵，则更能提高它的应用价值；②血吸虫干卵抗原片（或膜片）环卵沉淀试验，利用环卵抗原活性物质的耐热特性，将分离的纯卵超声和热处理，定量滴加，烤干固定于载玻片或预制的聚乙稀薄膜上。此种干卵膜片，保存时间较长（4℃半年），已有市售商品。试验时只需加入血清试样，湿盒孵育，判读结果与常规法相同。干卵膜片法还具有简化操作规程，提高卵抗原的规范要求，并可长期保存等优点。

　　COPT可作为诊断血吸虫病的血清学方法之一，及临床治疗病人的依据；可用作考核治疗和防治效果的方法；并且用于血清流行病学调查及监测疫情的方法。

　　（四）间接血凝试验

　　间接血凝试验（indirect　haemagglutination　test，IHA）是以红细胞作免疫配体的载体，并以红细胞凝集读数的血清学方法。最常用的红细胞为绵羊或人（O型）红细胞，来源方便。目前均用醛化红细胞，可保存半年而不失其免疫吸附性能。

　　操作步骤如下：

　　1．红细胞鞣化和致敏　①取醛化红细胞用0.15mol／L，pH7.2PBS离心洗涤2次，并用PBS配成2.5％悬液；②加等量1:2000鞣酸溶液（鞣酸不同批号，质量相差较大必须预试测定适宜浓度）37℃孵育20分钟，经常摇动；③离心去上清，PBS洗1次，再用0.15mol／L，pH6.4PBS配成10％悬液；④每份悬液加等量适当稀释的抗原液，置于37℃水浴箱中30分钟（每5分钟振动一次），离心去上清，pH7.2PBS洗2次，再用含1％正常兔血清（NRS）10％蔗糖缓冲液配成5％细胞悬液。加1‰叠氮钠防腐，存4℃或减压冻干备用，每批致敏细胞均需用已知阳性和阴性血清滴定灵敏度或特异性。阳性滴度在1:640以上，阴性血清不出现反应者可用。

　　2．微量血凝试验　在U型（或V型）微量血凝板上，将被试血清用1％NRS或BSA生理盐水作倍比系列稀释，每孔含稀释血清0.05ml。每孔加0.01ml致敏红细胞悬液（可用标定过的OT针头滴加），充分振荡摇匀，加盖于室温静置1～2小时读取结果。