当前位置: 主页 > 生物技术 > 实验技术与方法

人类外周血单核细胞的分离纯化方法

2006-07-24 14:26 未知 原始描述(2003年10月21日) 阅读 0
核心摘要: 本文详细介绍了从人类外周血中分离纯化单核细胞的标准操作流程,包括血液预处理、密度梯度离心和细胞纯化技术,适用于免疫学和细胞生物学研究。

背景介绍:人类外周血单核细胞(PBMCs)在免疫学、细胞治疗和疾病研究中具有重要应用。通过血液分离技术,可以获得纯净的单核细胞群体,包括淋巴细胞和单核细胞,便于后续的免疫分析和细胞培养。

操作流程:

  1. 将血库获得的血液样本中的Buffy Coat(白细胞层)倒入一个125毫升的锥形离心管中,并用无菌无内毒素的磷酸盐缓冲液(PBS)稀释至90毫升。
  2. 加入15毫升无菌的葡聚糖/PBS混合液,颠倒混匀四到五次。如出现气泡,用1毫升塑料吸管去除气泡。
  3. 在室温下静置20分钟,使红细胞沉降。
  4. 用塑料吸管将上清液转移到新管中,加入等体积的含EDTA的PBS,防止血小板聚集。
  5. 在室温下以1000×g离心10分钟,沉淀白细胞,血小板留在悬浮液中。
  6. 将上清液倒入含漂白剂的容器中,重悬细胞沉淀于1-2毫升PBS中,转移到新管中,避免血小板粘附在管壁上污染样品。
  7. 将细胞悬液稀释至50毫升,缓慢将12.5毫升悬液覆盖在含Ficoll-Hypaque的离心管中(每管15毫升Ficoll-Hypaque),形成密度梯度。
  8. 以800×g离心20分钟(无刹车),在12°C条件下进行。
  9. 单核细胞会在PBS/Ficoll界面形成浑浊的环,用2或5毫升吸管轻轻采集该界面层的细胞。
  10. 将采集的细胞转移到新管中,用PBS补足,离心沉淀细胞(800×g,至少10分钟),弃去上清液,重悬于适宜的缓冲液中。

缓冲液配制:

  • PBS/EDTA:含有4.3 mM Na₂HPO₄、2.7 mM KCl、1.8 mM KH₂PO₄、5 mM EDTA和137 mM NaCl,pH 7.2。
  • PBS:含有4.3 mM Na₂HPO₄、2.7 mM KCl、1.8 mM KH₂PO₄和137 mM NaCl,pH 7.2。
  • Ficoll-Hypaque 1077:在室温下预热15毫升,确保平衡。
  • Dextran/PBS:6%(w/v)Dextran T500,使用无钙钙镁离子的PBS制备。

注意事项:

  • 操作过程中应严格遵守生物安全规范,避免血液样本的污染和交叉感染。
    (提示:此物质具有生物危害性,应参照MSDS和机构政策进行处理。)
  • 气泡会捕获红细胞,影响分离效果,操作时应注意去除气泡。
  • 若需去除单核细胞中的单核细胞,可以将细胞在10厘米培养皿中培养30分钟至1小时,单核细胞会粘附在塑料表面,未粘附的淋巴细胞可转移至新管中用于后续实验。
    发表评论